Laboratorium Mikrobiologiczne

Laboratorium Mikrobiologiczne

INFORMACJE DLA PACJENTA 
CENNIK BADAŃ DIAGNOSTYCZNYCH – https://bieganski.org/pl/strefa/listc

Laboratorium Mikrobiologiczne jest czynne:
1. dla pacjentów od poniedziałku do piątku w godzinach od 7.00 do 14.002. w trybie dyżurnym

•  od poniedziałku do piątku w godzinach od 14.00 do 9.00
•  w soboty w godzinach od 7.00 do 13.00
•  w niedziele w godzinach od 7.00 do 12.00 

Odbiór Wyników Badań

• Wydawanie wyników w godzinach od 13.00 do 18.00 (po uzgodnieniu dnia odbioru w rejestracji)
• Wyniki badań mikrobiologicznych dla osób prywatnych wydawane są w godzinach od 7.00 do 14.30.

Informacje można uzyskać pod nr. tel. 56 641 45 69Pracownie
1. Pracownia Bakteriologii OgólnejPrzyjmowanie materiałów na posiew:

• mocz – od poniedziałku do czwartku w godzinach od 7.00 do 8.00
• inne materiały – od poniedziałku do piątku w godzinach od 7.00 do 18.00

2. Pracownia Prątka Gruźlicy
Przyjmowanie materiałów od poniedziałku do piątku w godzinach od 7.00 do 10.00
3. Pracownia Chorób Przenoszonych Drogą Płciową
Pobieranie materiałów w czwartki w godzinach od 8.00 do 14.00
4. Pracownia Mykologiczna
Pobieranie materiałów od poniedziałku do piątku w godzinach od 8.00 do 14.00

Pobieranie wymazów przez położną – czwartki w godz. 8:00-14:00
 Przygotowanie pacjenta do badań mikrobiologicznych:1. Zlecenie badania laboratoryjnego.

Do pobranego materiału do badań należy dołączyć „Zlecenie badania laboratoryjnego, które zawiera następujące dane:

 1.  Dane pacjenta – imię i nazwisko, data urodzenia, miejsce zamieszkania/oddział szpitalny, płeć, PESEL, nr identyfikacyjny pacjenta (podawany przy braku innych danych).

 2.  Dane lekarza zlecającego badanie lub innej osoby upoważnionej do zlecenia badania.

 3.  Dane jednostki zlecającej badanie.

 4.  Miejsce przesłania wyniku badania lub dane osoby upoważnionej do odbioru.

 5.  Rodzaj materiału i jego pochodzenie.

 6.  Zlecone badanie (ukierunkowanie).

 7.  Tryb wykonania badania.

 8.  Data pobrania materiału do badania.

 9.  Dane osoby pobierającej materiał do badania.

10. Data i godzina przyjęcia materiału do laboratorium.

11. Istotne kliniczne dane pacjenta.Procedura pobierania i transportu materiału do badań Przygotowanie pacjenta do badań w kierunku nużeńców ( Demodex sp.):

\W dniu badania w kierunku  nużeńców w rzęsach:

• rzęsy bez tuszu, kresek (makijażu)
• rzęsy (oczy) bez maści, suche, najlepiej nieumyte po nocnym wypoczynku
• odstęp kilku dni od okładów ze świetlika innych ziół czy leków miejscowych

Badanie nużeńców ze skóry twarzy:

• skóra twarzy bez podkładu, pudru (makijażu)
• skóra twarzy sucha bez kremu, najlepiej nieumyta rano i najlepiej  bez
• natłuszczenia kremem ubiegłego dnia wieczorem
• mężczyźni nieogoleni w dniu badania, jeżeli badanie ze skóry policzków i brody.

Najlepiej robić badanie przed włączeniem leczenia miejscowego lub z  tygodniowym odstępem od leków miejscowych, przed oczyszczaniem twarzy u kosmetyczki

Przygotowanie pacjenta do badań z dróg moczowo- płciowych.

1. Przed pobieraniem materiału do badań z dróg moczowo- płciowych kobiety nie powinny stosować zabiegów higienicznych z użyciem środków myjących.
2. Przynajmniej 2 dni przed badaniem nie należy odbywać stosunków płciowych (może być fałszywy wynik testu aminowego, nieprawidłowe pH pochwy, wpływ na BV, stopień czystości pochwy).
3. Kilka dni przed badaniem a najlepiej przez tydzień nie należy zakładać do pochwy żadnych preparatów miejscowych (globulki, czopki, kremy) (wpływ na wynik stopnia czystości pochwy, BV, drożdżaków, rzęsistka pochwowego, posiewu ogólnego).
4. Badanie w kierunku drożdżaków, rzęsistka pochwowego, BV, mykoplazm najlepiej wykonać po 2 tygodniach od zakończenia leczenia doustnego.
5. Badanie w kierunku zakażenia Chlamydia trachomatis należy wykonać przed lub po miesiączce (nie w środku cyklu!), co najmniej 3 tygodnie po ewentualnym leczeniu doustnym antybiotykiem. Zachować 1 dzień przerwy po badaniu ginekologicznym czy USG ginekologicznym.
6. Przed pobraniem materiału z cewki moczowej u mężczyzn i kobiet nie należy oddawać moczu przez co najmniej 2 godziny.

Przygotowanie pacjenta do mykologicznych badań chorób skóry i paznokci

1. Zmianę dokładnie umyć, nie skracać paznokci.
2. Nie stosować leków miejscowych przeciwgrzybiczych na 7-14 dni oraz preparatów natłuszczających i nawilżających na 5-7 dni przed badaniem.
3. Badanie można wykonać co najmniej po 1 miesiącu od zakończenia przyjmowania doustnych leków przeciwgrzybiczych w przypadku leczenia grzybicy skóry i po 3 miesiącach w przypadku leczenia grzybicy paznokci.
4. Odczekać co najmniej 2 doby po zmyciu paznokci zmywaczem.

Procedury pobierania moczu w kierunku chorób przenoszonych drogą  płciową

Pobieranie próbek moczu (od mężczyzn i kobiet) do badania Chlamydia trachomatis metodą PCR:

1. Pacjenci muszą powstrzymać się od oddania moczu przez okres 1 godziny poprzedzającej badanie.
2. Kobiety przed pobraniem moczu do badania nie powinny myć okolicy warg sromowych.
3. Pobrać 10 do 50 ml pierwszego strumienia moczu do czystego pojemnika polipropylenowego bez środków konserwujących.
4. Zamknąć pojemnik z próbką i oznaczyć odpowiednio etykietę. Próbkę można transportować do miejsca badania w temperaturze pokojowej. Próbki moczu są stabilne przez 24 godziny w temperaturze od 20 do 30 stopni C.

Pobieranie moczu do badań bakteriologicznych – posiew ogólny.

1. Wskazane jest pobranie próbki moczu przed wdrożeniem antybiotykoterapii.
2. Mocz oddany po przerwie nocnej minimum 4 godziny od ostatniej mikcji,
3. Należy umyć ręce wodą i mydłem; wysuszyć ręcznikiem jednorazowym lub świeżo wypranymi wyprasowanym
4. Po dokładnym umyciu okolic krocza i cewki moczowej i spłukaniu wodą oraz u mężczyzn po odciągnięciu napletka i dokładnym umyciu żołędzi prącia, około połowę zawartości pęcherza do ubikacji, a następnie , nie przerywając strumienia pobrać około 5 ml moczu bezpośrednio do przygotowanego jałowego naczynia nie dotykając jego brzegu i wewnętrznej powierzchni.
5. Zamknąć szczelnie pojemnik. Dostarczyć do laboratorium w ciągu 2 godzin.
6. Jeśli jest to niemożliwe, mocz do czasu transportu należy przechowywać w temperaturze 4 oC do 4 godzin.
7. Nie należy pobierać moczu od niemowląt do podklejonego woreczka ze względu na duże ryzyko zanieczyszczenia próbki florą zasiedlającą okolice dróg moczowo-płciowych.

Pobieranie nasienia na posiew

1. Przed pobraniem materiału do badania należy odczekać przynajmniej 7 dni od przyjęcia ostatniej dawki antybiotyku lub przed podjęciem leczenia przeciwbakteryjnego oraz nie stosować innych miejscowych środków chemicznych
2. Umyć ręce wodą z mydłem i wysuszyć ręcznikiem jednorazowym.
3. Następnie należy dokładnie umyć okolice krocza i cewki moczowej po odciągnięciu napletka.
4. Materiał pobiera pacjent samodzielnie do jałowego pojemnika
5. Pojemnik dokładnie opisać i dostarczyć jak najszybciej do Laboratorium Mikrobiologicznego w temp. pokojowej.

Pobieranie kału do badania mikrobiologicznego

1. Przed pobraniem kału do badania należy odczekać przynajmniej & dni od przyjęcia ostatniej dawki antybiotyku lub przed podjęciem leczenia przeciwbakteryjnego.
2. Kał oddać do wyjałowionego basenu do dokładnie umytego i wyparzonego/wygotowanego naczynia np.nocnik.
3. Ze świeżo oddanego kału, szpatułką przytwierdzoną do pokrywki jałowego pojemnika transportowego, należy pobrać grudkę wielkości orzecha laskowego ( z domieszką krwi, ropy śluzu- jeśli występują w kale) lub 2-3 ml płynnego kału.
4. Od noworodków i niemowląt próbkę pobrać z pieluchy natychmiast po oddaniu kalu.
5. Pojemnik dokładnie opisać i dostarczyć do Laboratorium mikrobiologicznego ( do 30 min od pobrania w temp. pokojowej, >1h próbke należy schłodzić w temperaturze lodówki).
6. Do badania w kierunku antygenów i toksyn Clostridium difficile oraz antygenów wirusów diagnostyczny jest wyłącznie kał płynny i półpłynny ( biegunka)!
7. Badanie w kierunku Clostridium difficile wykonuje się niezależnie od wprowadzonej antybiotykoterapii.

 Przygotowanie pacjenta do badania HPV metodą Real Time PCR.

1. Przez okres 12 – 24 godzin przed pobraniem materiału należy zrezygnować ze współżycia płciowego oraz ograniczyć zabiegi higieniczno-pielęgnacyjne okolicy narządów płciowych u kobiet i mężczyzn.
2. U pacjentek wymazu nie należy pobierać w okresie krwawienia miesiączkowego – (nie wcześniej niż drugiego dnia po okresie krwawienia i nie później niż dwa dni przed krwawieniem) – najlepiej pobierać materiał w 10 – 20 dniu cyklu.
3. Przez okres 48 godzin przed pobraniem wymazu nie należy stosować żadnych leków dopochwowych (zwłaszcza leków przeciwgrzybiczych) lub maści zewnętrznych, dopochwowych preparatów nawilżających.
4. Zachować 7 dni przerwy po leczeniu antybiotykami.
5. Zachować 1 dzień przerwy po badaniu ginekologicznym czy USG ginekologicznym.

Zakres świadczeń:

1. Posiew moczu 
2. Posiew moczu – test Goulda
3. Posiew wymazu z gardła, nosa, plwocina, kanał szyjki macicy, pępowina, pochwa, odbyt, posiew z rany, ucha, skóry, oka, nasienia, pokarm kobiecy
4. Posiew tlenowy + beztlenowy z ropy, materiału operac., wysięki, przesięki, płyny z jamy ciała
5. Posiew kału, wymaz z odbytu
6. Posiew płynu mózgowo-rdzeniowego
7. Posiew Tbc – plwocina
8. Posiew krwi
9. Posiew w kierunku MRSA i MRCNS
10. Posiew w kierunku Clostridium sp.
11. Posiew materiałów skąpobakteryjnych w kierunku Tbc
12. Posiew w kierunku Streptococus agalactiae
13. Identyfikacja Staphylococcus aureus
14. Identyfikacja Staphylococcus aureus w kierunku MRSA
15. Identyfikacja Moraxella sp.
16. Identyfikacja Streptococcus pneumoniae
17. Identyfikacja Haemophilus sp.
18. Identyfikacja Staphylococcus koagulazo (-) manualny
19. Identyfikacja Enterococcus sp.
20. Identyfikacja Haemophilus, influenzae/Neisseria meningitidis
21. Identyfikacja pałeczek gram ujemnych – manualna
22. Identyfikacja bakterii G (+) i G (-) – automatyczna
23. Wykrywanie odporności ESBL, MLSB
24. Identyfikacja Salmonella sp.
25. Identyfikacja Shigella sp.
26. Identyfikacja beztlenowców
27. Identyfikacja Tbc
28. Identyfikacja Rotawirusów/Adenowirus
29. Identyfikacja Clostridium sp.
30. Identyfikacja Candida sp.
31. Identyfikacja Candida albicans (układowa)
32. Identyfikacja Chlamydia trachomatis – aglutynacja
33. Identyfikacja Neisseria gonorrhoeae
34. Identyfikacja dermatofitów
35. Identyfikacja Trichomonas sp.
36. Identyfikacja Streptococcus B hem  z grupy ACDEFG
37. Identyfikacja Streptococcus agalactiae
38. Preparat barwiony metodą Grama – Bakterioskopia /Demodex/
39. Antybiogram manualny
40. MIC – metoda automatyczna Vitek 2
41. Oznaczenie najniższego stężenia hamującego 1 antybiotyku – MIC/MBL
42. Oznaczenie najniższego stężenia hamującego 1 antybiotyku – MIC/MBL – dostawka do etestu
43. Określenie antygenów w pł.-mr.
44. PCR – Badanie przesiewowe HPV
45. PCR Genotypowanie HPV
46. Badanie mikrobiologiczne wody
47. Badanie czystości mikrobiologicznej powietrza metodą sedymentacyjną/zderzeniową
48. Badanie skuteczności procesów sterylizacji tlenkiem etylenu
49. Badanie skuteczności procesów sterylizacji suchym powietrzem
50. Badanie skuteczności procesów sterylizacji autoklawów
51. Badanie czystości powierzchni
52. Badanie skuteczności lamp bakteriobójczych
53. Pobieranie wymazów bakteriologicznych
54. Pobieranie wymazu ginekologicznego
55. Pobranie mykologiczne
56. Pobieranie wymazu ginekologicznego w kierunku HPV
57. Zestaw do pobierania materiału ginekologicznego w kierunku HPV
58. Oznaczenie DNA Chlamydia trachomatis
59. Antygeny Streptococcus pneumoniae w moczu
60. Antygeny Legionella pneumophila w moczu
61. Antygeny Clostridium difficile w kale
62. Posiew beztlenowy kału w kierunku Clostridium difficile
63. Toksyna Clostridium difficile A+B+GDH
64. Pobieranie prób mikrobiologicznych ze środowiska szpitalnego
65. Identyfikacja antygenu Norovirus w kale
66. Identyfikacja antygenu wirusa RSV w materiałach z górnych dróg oddechowych
67. Posiew i lekowrażliwość – Ureplasma urealiticum i Mycoplasma hominis
68. Antygen wirusa influenza A+B (+A H1 N1) w wymazach z górnych dróg oddechowych
69. Popieranie próbek wody w kierunku Legionella spp.
70. Posiew próbki wody w kierunku Legionella spp.
71. Identyfikacja Legionella spp. w próbkach wody
72. Badanie w kierunku Listeria spp. w materiałach z powierzchni
73. Badanie powierzchni na obecność ATP metodą luminonetryczną
74. QFT TB Gold – cito
75. QFT TB Gold
76. QFT TB Gold – zestaw do pobrania
77. Test w kierunku zarażenia wirusem SARS-CoV-2 metodą RT-PCR
78. Test w kierunku zarażenia wirusem SARS-CoV-2 antygenowy (kasetkowy)

Większość badań z wyżej wymienionej listy można również wykonać komercyjnie wg cennika. O szczegóły dotyczące badań możecie Państwo pytać dzwoniąc pod numery podane poniżej. 

Dane kontaktowe

Laboratorium Mikrobiologiczne – FAX

56-641-4568

Laboratorium Mikrobiologiczne – Kierownik

56-641-4560

Laboratorium Mikrobiologiczne – Pracownia Diagnostyki Mikrobiologicznej Ogólnej

56-641-4561

Laboratorium Mikrobiologiczne – Sekretariat

56-641-4569